有哪位高手知道Chromas pro 怎么用，请帮忙啊~~

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ChromasPro 1.41 使用说明

1.0 TITLE（标题） （标题） 使用 ChromasPro 1.41 版本软件对基因型进行分析 PURPOSE（用途） （用途） 2.1 ChromasPro 是对基因和蛋白质序列进行分析的生物软件。 应用生物系统公司基因分析仪和西门子 Trugene 产生的序列和图 谱可以用 ChromasPro 软件查看、编辑和制图。 2.2 ChromasPro 用于基因序列的剪切和编辑和抗病毒药物的耐 药监测 2.3 ChromasPro 有能力组装成一个连续的重叠共享序列片段。 此外， 该软件还可以用来识别发现在同一区域的不同片段的序列多 态性 3.0 EQUIPMENT（设备） （设备） 3.1 有奔腾处理器的电脑或等同的 3.2 ChromasPro 1.41 版本软件 SUPPLIES N/A SPECIAL SAFETY PRECAUTIONS N/A

2.0

4.0

5.0

6.0

PROCEDURE （步骤） 步骤） 6.1 Procedure Limitations and Requirements（程序的限制和要求） （ 6.1.1 确保待分析的序列有最好的质量。 如果 序列的图谱片段较差，需要重新测序 6.1.2 每次测序需要加入已知序列的阳性质控对照 6.1.3 序列片段小于 350 个碱基时的准确性是非常好的。 （误差＜0.1%）。 6.1.4

6.2

6.3

序列片段在 500 个碱基的准确性取决于 PCR 的产物 质量和所使用的测序技术。 Sequence Assembly（序列的拼接） （序列的拼接） 6.2.1 从 file 菜单中选择 new， new 选 sequencing project. 在 6.2.2 . Choose Settings 在目 project 项单中选择 setting 显示出 project setting 对话框。设置序列输入 的长度及输入比对序列。 6.2.3 Import Sequence Fragments 从 project 项单中选 择 add files 把序列片段导入 project。多个序列片段可以 被导入，已经导入的文件不能再被导入。 6.2.3.1 . For a batch save 如果不止一个样本需要编 辑，在保存为一个单独 project 之前导入多个序列。 不要超过 32 个样本，否则编辑时会降低打开和关闭 时的速度。 6.2.4 . Trim out the unwanted sequences using Set/Clear Left and Right Cutoffs （使用 Set/Clear Left and Right Cutoffs 剪去不需要的序列） 双击序列的名称，窗口将显 剪去不需要的序列） 示序列的图谱。把鼠标指向图谱的任何位置可以对图谱的 左边或右边进行截断。 按住 Shift 键并点击鼠标左键向左或 向右，如果一个碱基被选中，set cutoff 在 eidt 菜单中 可供选择。如果截断已经在可供选择的菜单中设置为 clear cutoff ，移去 cutoff settings。在 edit 菜单中选择 delete cutoff sequence ，将截断两边的碱基。 6.2.5 Assemble Project 序列片段截断以后，在 project 中选择 assemble all ，拼接后的序列片段在 contigs 中。如 果序列片段拼接后不是所期望的，在 project 中重新调整序 列片段的截断。单击 contig 可以把 contig 改写成样本的编 号。 Edit Consensus Sequence（编辑共享序列） （编辑共享序列） 6.3.1 在 project 中双击 contig 或者样本编号，将显示编辑 共识序列。在共识序列中会自动显示第一个可能的错误。这 些碱基被标记成黑体直到被编辑。 6.3.2 如果碱基确认是正确的话，按 ctrl+M 消除黑体。在 edit 菜单中选择 reset all ambiguities 被更正过的碱基可以复 原 6.3.3

6.3.4

如果一个碱基需要被更正， 更正确认后将变成小写字 母。按 ctrl+M 消除黑体。第一或第二个人能返回后，进行 双编辑和识别那些更正后的碱基。 edit 菜单中选择 reset all 在 ambiguities 可以是使所有被更正过的碱基可以复原。 . 碱基被编辑后，按 ctrl+E 以前进到下一个可能的错 误。Translation display 在 options 菜单中可供选择。 当潜在的错误显著时， 所有相关的图谱都会被显示和 排列。改变图谱的尺度应用，使所有的核苷酸在拼接的 contig 中排列。

6.3.5

6.3.6 在排列中由于间隙的插入图谱将会被拉长， 这可能使 确定间隙中是否含有核苷酸变得困难。在这种情况下，关闭 按 Alt + S 或在 options 菜单切换图谱规模变量线形缩放。 此选项的默认设置可以在设置对话框改变。在每个图谱在 Y 轴的缩放， 可以通过点击和滑动在工具栏控件的图谱 Y 轴的 缩放设置。 6.3.7 个别碱基可以通过点击图谱序列碱基的显示或排列 进行编辑。只有在碱基没有被编辑时，在共享序列中的相应 碱基将会被更新。 . 个别序列片段可以从 contig 中移除，只要移除后不 会使其分裂成两部分。点击需要切除的片段的名称，在 eidt 菜单中选择 remove sequence 即可把序列片段移除。 6.3.8.1 注意： 如果命令是灰色， 选中的序列将不能被 移除

6.3.8

6.3.9 我们分析的目标序列是从蛋白酶基因的第 1 个密码子到逆 转录酶基因的第 300 个密码子。 在编辑过程中剪切去除那些 引物碱基和非目标碱基的序列。. Guidelines for Identifying Mixtures and Editing the Bases （识别 混合碱基和编辑碱基的原则） 混合碱基和编辑碱基的原则） 6.4.1 正反两条序列在同一位置都有高于背景的第二峰值 （第二峰值大约高于背景值的两倍），可能包含混合碱基。 在一些情况下，从软件上看混合碱基不能被识别。有时候， 第二峰在两个方向上都有出现， 但是， 是作为背景值的杂峰。 由于背景的干扰， 可能会出现假的混合碱基。 在这种情况下， 重复样本。 6.4.2

6.4

单条序列中的第二峰高度是主峰值的 30%以上，且是背景值的3倍，可能包含混合碱基。需要注意 需要注意 区分染料的污染，可能会导致假的混合碱基。 区分染料的污染，可能会导致假的混合碱基。 6.4.3 在极少数情况下，混合碱基与上面的原则不匹配，例 如在碱基中有多峰或峰的漂移。 6.4.4 选择不正确的碱基，使用鼠标可以根据 需要更改或删除。一旦碱基被选中，通过使用左，右箭头使 滚动序列。点击两个碱基之间进行插入。 6.4.5 碱基内可以移动两个相邻碱基之间的空间， 用鼠标点 击并拖动或按住 Ctrl 键并使用方向键。 6.4.6 在 options 菜单中设置对话框 打开时，碱基是不能 被拖动的。如果持续编辑 options 菜单中启用，下一个碱基 会自动被选择编辑。 Reverse Complement（逆向互补） （逆向互补） 6.5.1 点击 Reverse Complement 按钮。序列和图谱的方向 会改变。 Find Sequence（发现 序列） 序列） （ 6.6.1 通过精确的匹配或最理想的排列搜索特定的序列。 6.6.2 点击 find first 找到第一个出现的序列，点击 find previous 找到当前碱基的前一个碱基，点击 find next 找到 当前碱基的下一个碱基。 6.6.3 : 搜索是不区分大小写的， 下面的冗余码能在序列中使 用： A=Adenosine R=A or G (purines) C=Cytidine Y=C or T (pyrimidines) G=Guanosine K=G or T (keto) T=Thymidine M=A or C (amino) B=C,G or T S=G or C (strong-3H bonds) D=A,G, or T W=A or T (weak-2H bonds) H=A,C, or T N=A, G, C, or T (any base) V=A,C, or G I=Inosine U=deoxyuridine 6.6.4 一旦序列中的第一个碱基被选中。 同一序列的其它碱 基可以通过点击它的窗口和点击 find first，find previous 或 者 find next 进行搜索

6.5

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6.9

Print or Copy Assembled Sequences or Specific Area of the Sequence 打印或者复制拼接序列或序列特定的部分 6.7.1 大多数的拼接序列打印来说太长。在 files 菜单中选 择 print selection 把序列中的目的片段打印出来 6.7.2 在 analysis 菜单中选择 contig map 可以选中整个图 表。图表可以复制和粘贴到文字处理器或图形应用程序 Confirmation of Sequencing Editing 确认编辑的序列 6.8.1 第二个熟悉程序的实验室分析者将检查和确认所有 编辑的碱基 6.8.2 序列准备被输出和保存，做进一步分析 Export Consensus Sequence 输出共享 输出共享序列 6.9.1 编辑完成序列时，在序列编辑器中打 开共享序列，从 files 菜单中选择 export to editor。此序列 可以保存为不同的格式。 6.9.2 为了进一步分析，最终把共享序列保存为 fasta 格式

使用Chromas可以打开ab1文件。 *** 作如下：

1、首先找到文件后缀名以“ab1”格式存在的文件。

2、然后在chromas软件主页面点击上方菜单栏中的“file”>“open”，或者直接使用快捷键“ctrl+O”；

3、直接点击主页面功能区的open也可以。

4、打开窗口选中“ab1”文件，点击打开。

5、打开后查看内容即可。

我一般用chromaspro，没用过vector nti，但我看了下，基本 *** 作时一样的。

http://baike.baidu.com/view/4581482.htm

看测序结果，主要是看波形图，一般现在的测序，最前面的10个左右的测序结果是不可信的，600bp之后的波形也要看图形质量如何。

如果波形稳定，波峰信号强，就是比较可信的。

需要注意的是，你自己的样品中，有无序列多态性，比如点突变之类的，这时就要仔细看波形，有无叠峰、双峰，因为最终的序列结果计算机只给你一个碱基，但有可能在这个位点有多个多态性。

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