overlap pcr程序怎么设定

overlap pcr程序怎么设定,第1张

因为不清楚你所扩增的全长片断、以及Overlap过程中要搭在一起的两个片断各是多长,所以无法提供非常具体的意见。谈一点我的经验,供参考。

overlap能成功,要点是overlap的部分能保证有效的退火(形象地说,能牢固地“粘”在一块)。所以overlap的部分要有一定长度(你的试验中25bp的重叠区应该够长),并且注意这部分的GC含量,以便使这部分(重叠的25bp)有一个合适的Tm值(例如65度),而且你使用的PCR循环所用的退火温度应该低于此温度——否则overlap的部分可能“粘”不到一起。

另外一点是要意识到overlap的前后两段核酸单链有可能形成一定的空间结构!尤其是PCR退火温度较低、降温速度较快时更增加这种情况的几率。前后两段越长越容易形成某种空间结构。而这种空间结构可能会对overlap区的退火造成影响。 当然,overlap区本身也有形成某种空间结构的可能(例如发夹结构),但这可以通过软件设计(如引物设计软件)来避免。

得不到全长片断,我认为首先要考虑overlap区没有成功退火。所以建议你使用TouchDown PCR试试。TouchDownPCR方法在分子克隆上有介绍。这种PCR使用一个较高的退火温度,循环几周(如三周)后降一度,然后在此温度上再循环几周,以此类推。通常最高和最低退火温度间可相差十度。Touch Down PCR有利于解决空间结构影响overlap区退火的问题,增加扩增成功的机会。

其他的可尝试的地方,也可以试试加用一些变型剂,如甲酰胺、DMSO等。也可同Touch Down PCR配合使用。但建议先单纯试试TouchDown PCR。

Overlap PCR开始几个循环模板本来就是当引物使用的,所以模板可以多加,1和2都加到100ng左右。

你没有告诉我1b(2a)的Tm,Overlap的前几个循环要考虑两个模板互补的Tm。你的退火温度太低了,特异性不够强(除非你的Taq酶对退火温度有特殊要求,这个我不知道)。

我的建议:前10个循环,用1a,1b,2b中最低的Tm做退火温度,适当延长退火时间。后25个循环用1a,2b中最低的Tm做退火温度,正常退火时间(和你Taq酶的要求有关)。你模板链长度不小,不要怕多加模板。


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