从父控件中取出子控件

比如说从标题栏中取出对应的按钮

最近总写成 selftitlesView[index]

这样是错的，正确的写法selftitlesViewsubviews[index]

一定要从subViews中取

子控制器是childViewControllers[index]

每个UITableViewCell里有个UITextField，当UITextField获得焦点时不会触发tableview的didSelectRowAtIndexPath方法，就不能知道触发是哪个cell，可以获得UITextField所在行的indexPath，方法很简单，注意两种方式。

'以下是部分 TreeView 属性方法，自己参考试着写

Trv1SelectedItemIndex 总的顺序索引号

Trv1SelectedItemKey 返回该标签的 Key 值

Trv1SelectedItemRoot 返回根标签

Trv1SelectedItemParent 返回父节点

Trv1SelectedItemChildren 返回其下有几个子节点(子)

Trv1SelectedItemChild 返回其下第一个子节点(子)

Trv1SelectedItemPrevious 返回同层的上一个节点标签

Trv1SelectedItemNext 返回同层的下一个节点标签

Trv1SelectedItemFirstSibling 返回同层的第一个标签

Trv1SelectedItemLastSibling 返回同层的最后一个标签

Trv1SelectedItemFullPath 返回从第一层节点开始以“\”分割的路径字符串

Trv1SelectedItemSelected 设置/返回该标签是否被选择(True|False)

Trv1LabelEdit = 1|2 编辑标签的模式1(自动)|2(手动)

Trv1SingleSel = True|False 返回或设置一个值，指定项目被选中时是否展开并折叠前一个。

Trv1StartLabelEdit 编辑标签开始，调用该方法时，BeforeLabelEdit 事件也同时发生。

'取得顶层(父)节点标签

If Not (Trv1SelectedItemParent Is Nothing) Then

MsgBox "顶层节点是：" & Trv1SelectedItemParent

End If

'取得同层的前一个节点标签

If Not (Trv1SelectedItemPrevious Is Nothing) Then

MsgBox "前一个标签是：" & Trv1SelectedItemPrevious

End If

'取得同层的后一个节点标签

If Not (Trv1SelectedItemNext Is Nothing) Then

MsgBox "后一个标签是：" & Trv1SelectedItemNext

End If

当今二代测序仪器中应用最为广泛的当属illumina公司的测序仪，以Hiseq-2000测序仪为例，其有2个流动槽（flowcell），每个flowcell有8条lane（通道），而单就其一条lane的测序数据量就可达44G。

然而对于目前的外显子组测序来说，测序区域大约64M，测序深度200X，总数据量也才13G，Hiseq-2000的一个lane就足以测定3个外显子组样品。以转录组来说，一个样品测序量不会超过4G，一个lane可以同时测定10个转录组样品。大体而言，外显子组测序、转录组测序、miRNA测序、lncRNA测序、ChIP测序等组数据，每个样品所需的数据量通常都比较少。

测序数据的单位

核酸序列数据是以“A、T、G、C”碱基顺序表示，而其数量的大小可以使用k、M、G等单位来表示，k代表10 3 、M代表10 6 、G代表10 9 ，例如，人全基因组大小为3G（或3Gb），也就是3X10 9 b。 此外，计算机的存储单位也是使用k、M、G等单位来表示的，不过计算机的存储单位的换算为1024进位，不同于碱基序列的1000进位。考虑到一个字母在计算机内存储为1Byte，因此粗略使用时，测序数据量可以近似等于其占用计算机的大小。

由于测序仪器的测序能力远大于测试样本序列量，为避免仪器浪费，因此一个lane同时测定多个样品成为很自然的思路。然而为了区分多种样品的序列，就必须要给不同样品加上特定的“标签”，从而可以在后续数据分析时将不同样品数据分开，而这个“标签”就是barcode。

简言之，barcode就是测序中混合样品的”身份z“，用于区分不同样品。

下图来自文献《 Multiplexed Illumina sequencing libraries from picogram quantities of DNA 》

对于illumina的hiseq平台而言，测序前，我们需要建库。

barcode的选择有两个原则：碱基平衡和激光平衡。

碱基平衡是指的需要兼顾barcode序列的平衡度与复杂度，平衡度是指的碱基的比例是均衡的（1:1是最均衡的），而复杂度是指的碱基的种类是多样的（四种碱基同时存在是最多样的）。

所以最好的barcode序列应该是同时有A、T、G、C四种碱基，且各碱基所占比例近似均为25%。

此处所说的碱基平衡是指的多个barcode之间的平衡，并非一个barcode内部的碱基平衡。举例来说，有12个转录组样品需要测定，那么就需要12个barcode（假定每个barcode长度为6位），根据碱基平衡原则，第一位barcode碱基应该尽量同时存在A、T、G、C四种碱基，且各碱基所占比例近似均为25%，也就是这12个barcode序列最佳情况应该是以A、T、G、C开头各3个。剩余5个碱基位的barcode以此类推。

在illumina测序仪中，A和C两种碱基共用一种激光，由波长660nm的红激光激发；G和T共用一种激光，由波长532 nm的绿激光激发。因此假使不能满足碱基平衡的情况下，可以退而求其次，尽量满足激光平衡。

简单来说，激光平衡就是尽量在使用的一组barcode中满足每个碱基位都是A+C=G+T。

既不满足碱基平衡，又不满足激光平衡的barcode将会有很大的数据分离隐患，或者无法分离开样品，或者无法识别某些测序片段。

Illumina推荐的12个barcode序列详列如下。

以其中的第一个位置为例（纵列），A:G:C:T=3:3:3:3=1:1:1:1。实际上，该barcode组合每个位置的碱基比例都接近1:1（具体见下表），碱基平衡度接近完美。

位置 1st 2nd 3rd 4th 5th 6th

A 3 3 4 3 3 3

T 3 3 3 3 4 3

C 3 3 3 3 2 3

G 3 3 2 3 3 3

样本数少于4种，必然无法满足碱基平衡，怎么办

如果样本数少于4种，则barcode每一个位置的碱基最多只有3种，不可能做到碱基平衡，怎么办呢？这时一定要尽量保证激光平衡，切不可在同一barcode位放置同一种荧光碱基，甚至是同一种碱基。

当然Illumina也提供了这种情况的解决方案，他们推荐的low-level pooling的barcode组合有3种，序列如下：

2重组合

3重组合

6重组合

这3种barcode组合包含有一个共同的内核：6号barcode和12号barcode。6号和12号组合是百分百激光平衡的，其每一个位置（纵列，即GC、CT、CT、AG、AT和TA）都分别属于不同的激光。也就是说，只要barcode组合中包含6号和12号，就能满足最基本的de-multiplexing要求，不至于数据完全失误。

除了illumina推荐的12个barcode，还有康奈尔大学的96个针对ApekⅠ酶建库的barcode，华中农业大学的96个针对MseⅠ酶和SacⅠ酶的barcode，美国科罗拉多大学博尔德分校的丹尼尔还发表了设计barcode的软件。

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